Practica Nº 3 "Pipeteo" 2Lm Olmos sahagun Genaro
Practica N° 3 “Pipeteo”
*Índice:
-Objetivo de la práctica
-Introducción-Desarrollo de la práctica
-Bitácora
-Conclusión
*Objetivo:Esta práctica tiene como objetivo, que nosotros los alumnos pongamos en práctica los conocimientos anteriormente vistos y aprendamos a medir cantidades en volumen, así como el manejo adecuado de pipetas, probetas y matraces, ya que será lo que posteriormente utilizaremos mas adelante
*Introducción:En esta práctica llamada “Pipeteo” realizaremos algunos procedimientos que nos sirven para mejorar las perfecciones de medidas y como utilizar las pipetas volumétricas y automáticas, así como saber medir bien los mililitros y aprender a pipetear sustancias que en este caso fue agua.
*Material:-Probeta graduada 25ml
-Probeta graduada 100ml
-Matraz erlenmeyer 250ml
-Pipeta Pasteur-Pipeta graduada volumétrica 10ml
-Pipeta volumétrica 5ml-Pipeta automática
-Pipeta volumétrica de 1000ml
-Lóbulo-Agua*Marco teorico
-Procedimiento: Cada uno de los integrantes realizara la misma actividad, se pipeteara con las 5 pipetas entregadas y se colocara la muestra del liquido en la probeta, se pipetearan desde 1ml hasta 5 ml. Una vez hecho eso se colocara una gota de cada pipeta en una caja de petri y se compararan sus tamaños.
-Nota: Pipeta Pasteur, se aprieta el lóbulo para succionar el agua contenida en el matraz Erlenmeyer hacia la probeta, al utilizarla 5 veces se llego a los 3 ml
-Pipeta volumétrica ( 1ml): Se succiona el agua con la boca, después lo colocamos en la probeta graduada y comprobamos que aspira mas realmente 1 ml de agua
-Pipeta volumétrica (5ml): Se succiona con la boca, sostenemos con el menisco, soltamos y ponemos el agua en la probeta comprobando que si son 5ml exactos.
-Pipeta graduada (10ml): Se aspira el agua, de igual modo sostenemos con el menisco hasta el 10, luego colocamos el líquido en la probeta donde comprobamos que son 10 ml
-Comparación de gotas:1.- Pipeta Pasteur (gota mas pequeña)2.
- Pipeta automática en 10micro litros (gota mediana pequeña)3.
- Pipeta graduada de 1ml (gota mediana)4.
-Pipeta volumétrica 5ml (gota mediana, grande)5.
- Pipeta graduada volumétrica 10ml (grande)
*Bitácora:
-Colocación del equipo de bioseguridad………………………..5min
-Explicación del profesor…………………………………………10min
-Recolección dematerial…………………………………………5min
-Realización de practica………………………………………….1hora
-Retirar equipo de bioseguridad………………………………..5min
*Conclusión:Esta practica como todas las demás ya realizadas son importantes pues aprendemos nuevas cosas que nos serán de gran ayuda mas adelante, en este caso, el pipeteo de sustancias asi como aprender a utilizar correctamente los materiales como las pipetas y saber medir correctamente las cantidades.
viernes, 8 de mayo de 2009
PESOS Y MEDIDAS
INDICEObjetivo,Introducción,Desarrollo,Bitácora,Conclusión y Fuentes de consulta
OBJETIVO DE LA PRÁCTICA
En la práctica se tiene como principal objetivo el uso de la balanza, así como también que el alumno se familiarice con diversos instrumentos como (cristalería, entre otros). En la practica se quiere conocer los pesos del objeto o con un reactivo, esto con ayuda de la balanza granataria.
INTRODUCCIONDicha práctica tiene el nombre de “Pesos y medidas” y se realiza con el fin de conocer medidas de los pesos correspondientes a los instrumentos dados. Para esto los instrumentos se pesaran en la balanza granataria, la cual debe estar balanceada, para tratar que el peso dado sea exacto y correcto. Esta práctica es el primer paso para la preparación del cultivo.
MARCO TEORICOMaterial:-Azúcar -Sal -vaso de pp50ml-vaso de pp 500ml-laminilla de cristal-Caja de petri-probeta-tubo de ensayo-vidrio de reloj-cristalizador-pipeta graduada 5ml-pipeta volumétrica-pipeta Pasteur-pipeta de Salí-manguera con boquilla-espátula-pipeta graduadaLa práctica consiste en pesar en la balanza granataria los materiales indicados.
Para ello primeramente debemos pedir el material necesario, observar si la balanza granataria esta bien balanceada y después empezar a pesar los instrumentos. Cada integrante del equipo deberá pesar por lo menos un material y anotar sus observaciones.-
Pasos1.
El alumno debe de portar su equipo de bioseguridad correctamente.
2. Observar si la balanza esta correctamente balanceada.
3. Colocar los instrumentos en la balanza y anotar su peso.
4. Se realizara el mismo procedimiento con los demás materiales.
5. Se pesa el vaso de pp. de 50 ml con azúcar primero y después con sal, así como vacio.
6. Por ultimo se registran los datos obtenidos.
7. Se limpian los instrumentos usados y se guardan en orden.Pesos registrados.
Vaso de pp 50ml:28 gr
Vaso de pp 500ml:116gr
Laminilla de cristal:56.6gr
Caja petri:71 gr
Probeta graduada:145 gr
Tubo de ensaye:17.9 gr
Vidrio de reloj:55.4 gr
Cristalizador:21.8 gr
Volumetrica :22.6 gr
Pipeta pasteur:5.6 gr
Pipeta de Sali con manguera:7.3 gr
Espatula:49.5gr
Pipeta graduada de 1ml:3.4 gr
Agua destilada:5.4 gr
Sal:36.7 gr
30 ml de azucar:25.2 gr
Agar de hierro kligler:4.42 gr
BITACORATiempo actividad5 min portar equipo de bioseguridad50 min medida de los materiales5 min anotaciones5 min retirar equipo de bioseguridad
CONCLUSIONLa practica ya realizada anteriormente logro su objetivo, ya que el alumno se familiarizo y aprendio a utilizar la balanza granataria, asi como conocer los pesos de los instrumentos que se le proporciono.
INDICEObjetivo,Introducción,Desarrollo,Bitácora,Conclusión y Fuentes de consulta
OBJETIVO DE LA PRÁCTICA
En la práctica se tiene como principal objetivo el uso de la balanza, así como también que el alumno se familiarice con diversos instrumentos como (cristalería, entre otros). En la practica se quiere conocer los pesos del objeto o con un reactivo, esto con ayuda de la balanza granataria.
INTRODUCCIONDicha práctica tiene el nombre de “Pesos y medidas” y se realiza con el fin de conocer medidas de los pesos correspondientes a los instrumentos dados. Para esto los instrumentos se pesaran en la balanza granataria, la cual debe estar balanceada, para tratar que el peso dado sea exacto y correcto. Esta práctica es el primer paso para la preparación del cultivo.
MARCO TEORICOMaterial:-Azúcar -Sal -vaso de pp50ml-vaso de pp 500ml-laminilla de cristal-Caja de petri-probeta-tubo de ensayo-vidrio de reloj-cristalizador-pipeta graduada 5ml-pipeta volumétrica-pipeta Pasteur-pipeta de Salí-manguera con boquilla-espátula-pipeta graduadaLa práctica consiste en pesar en la balanza granataria los materiales indicados.
Para ello primeramente debemos pedir el material necesario, observar si la balanza granataria esta bien balanceada y después empezar a pesar los instrumentos. Cada integrante del equipo deberá pesar por lo menos un material y anotar sus observaciones.-
Pasos1.
El alumno debe de portar su equipo de bioseguridad correctamente.
2. Observar si la balanza esta correctamente balanceada.
3. Colocar los instrumentos en la balanza y anotar su peso.
4. Se realizara el mismo procedimiento con los demás materiales.
5. Se pesa el vaso de pp. de 50 ml con azúcar primero y después con sal, así como vacio.
6. Por ultimo se registran los datos obtenidos.
7. Se limpian los instrumentos usados y se guardan en orden.Pesos registrados.
Vaso de pp 50ml:28 gr
Vaso de pp 500ml:116gr
Laminilla de cristal:56.6gr
Caja petri:71 gr
Probeta graduada:145 gr
Tubo de ensaye:17.9 gr
Vidrio de reloj:55.4 gr
Cristalizador:21.8 gr
Volumetrica :22.6 gr
Pipeta pasteur:5.6 gr
Pipeta de Sali con manguera:7.3 gr
Espatula:49.5gr
Pipeta graduada de 1ml:3.4 gr
Agua destilada:5.4 gr
Sal:36.7 gr
30 ml de azucar:25.2 gr
Agar de hierro kligler:4.42 gr
BITACORATiempo actividad5 min portar equipo de bioseguridad50 min medida de los materiales5 min anotaciones5 min retirar equipo de bioseguridad
CONCLUSIONLa practica ya realizada anteriormente logro su objetivo, ya que el alumno se familiarizo y aprendio a utilizar la balanza granataria, asi como conocer los pesos de los instrumentos que se le proporciono.
PRACTICA. MICROSCOPIO ELECTRONICO
*INDICE
.-Objetivo
.-Introducción
.-Marco teórico
.-Bitácora-Conclusión
.-Ficha Bibliográfica
.-Objetivo:El objetivo de esta primera práctica era aprender a enfocar el microscopio. Por lo que primeramente colocamos una cámara de Neubauer.Para enfocar el microscopio estuvimos jugando con las pinzas para la platina y los tornillos macro y micrométrico hasta que conseguimos enfocarlo. Y nos dimos cuenta de que ya estaba enfocado porque podíamos observar unos cuadritos.
-Introducciòn:Para lograr un enfoque del microscopio, primeramente tendremos que manipular las pinzas para la platina, jugar con ellas hasta lograr el enfoque perfecto. Y utilizaremos el objetivo 10x.También vamos a mover los tornillos macro y micrométrico hasta lograr observar una cuadricula. Muchos pequeños cuadritos perfectos.Después de eso observaremos una muestra de cebolla y registraremos lo que hemos observado. Repetiremos el mismo con una muestra de tomate y con una muestra de vegetal (hoja) en este caso es repollo.Al terminar de observar todas las muestras, realizaremos dibujos, bitácoras, y apuntes de nuestras observaciones en las prácticas.
-Marco teorico:Materiales:Microscopio compuestoCubre y porta objetosCámara de NeubauerCebollaTomateRepollo
Procedimiento:Se coloca la cámara de Neubauer en la platina y se comienza a mover las pinzas para la platina y los tornillos macro y micrométrico hasta conseguir un perfecto enfoque.Repetir procedimiento con la muestra de cebolla, tomate y repollo. Al tener el perfecto enfoque lo que observe fueron muchos pequeños y perfectos cuadritos. Tales como en una lámina cuadriculada.
Muestra de cebolla: Lo que observe con la cebolla una vez enfocado el microscopio, se veían muchos círculos deformes como gelatinosos y color transparente, uno encimado del otro.
Muestra de tomate: Lo que pude observar aquí, fue como la figura de una estrella, un poco deforme de color rojo bajito.
Muestra de repollo: Al colocar la muestra de repollo sobre el porta y cubreobjetos y tenerlo bien enfocado pude observar que parecía como gel, de color verde bajito y se podía observar como una veredita en medio.Observacion del Tomate a través del microscopio
Observacion de la cebolla enfocada en el microscopio
Bitacora:-Colocar equipo de bioseguridad 15 minutos
-Enfoque grupal del microscopio 30 minutos
-Enfoque por Genaro 3 minutos
-Enfoque por ilan 3 minutos
-Enfoque por eric 6 minutos
-Enfoque por erick 5 minutos
-Observación de cebolla 3 minutos
-Obervacion de Tomate 5 minutos
-Observaciones de repollo 2 minutos
Conclusion:En esta primera práctica aprendimos a enfocar el microscopio compuesto, moviendo las pinzas para la platina al igual que los tornillos macro y micrométrico hasta obtener un perfecto enfoque.Como parte de la práctica observemos muestras de vegetales: Cebollas, tomate y repollo.
Fue muy interesante ver como esta constituido, ya que es algo que el ojo humano por si solo no puede captar.Sin duda este era el primer paso para poder realizar las siguientes prácticas.Ficha bibliografica:-Apuntes del laboratorio de Química.
*INDICE
.-Objetivo
.-Introducción
.-Marco teórico
.-Bitácora-Conclusión
.-Ficha Bibliográfica
.-Objetivo:El objetivo de esta primera práctica era aprender a enfocar el microscopio. Por lo que primeramente colocamos una cámara de Neubauer.Para enfocar el microscopio estuvimos jugando con las pinzas para la platina y los tornillos macro y micrométrico hasta que conseguimos enfocarlo. Y nos dimos cuenta de que ya estaba enfocado porque podíamos observar unos cuadritos.
-Introducciòn:Para lograr un enfoque del microscopio, primeramente tendremos que manipular las pinzas para la platina, jugar con ellas hasta lograr el enfoque perfecto. Y utilizaremos el objetivo 10x.También vamos a mover los tornillos macro y micrométrico hasta lograr observar una cuadricula. Muchos pequeños cuadritos perfectos.Después de eso observaremos una muestra de cebolla y registraremos lo que hemos observado. Repetiremos el mismo con una muestra de tomate y con una muestra de vegetal (hoja) en este caso es repollo.Al terminar de observar todas las muestras, realizaremos dibujos, bitácoras, y apuntes de nuestras observaciones en las prácticas.
-Marco teorico:Materiales:Microscopio compuestoCubre y porta objetosCámara de NeubauerCebollaTomateRepollo
Procedimiento:Se coloca la cámara de Neubauer en la platina y se comienza a mover las pinzas para la platina y los tornillos macro y micrométrico hasta conseguir un perfecto enfoque.Repetir procedimiento con la muestra de cebolla, tomate y repollo. Al tener el perfecto enfoque lo que observe fueron muchos pequeños y perfectos cuadritos. Tales como en una lámina cuadriculada.
Muestra de cebolla: Lo que observe con la cebolla una vez enfocado el microscopio, se veían muchos círculos deformes como gelatinosos y color transparente, uno encimado del otro.
Muestra de tomate: Lo que pude observar aquí, fue como la figura de una estrella, un poco deforme de color rojo bajito.
Muestra de repollo: Al colocar la muestra de repollo sobre el porta y cubreobjetos y tenerlo bien enfocado pude observar que parecía como gel, de color verde bajito y se podía observar como una veredita en medio.Observacion del Tomate a través del microscopio
Observacion de la cebolla enfocada en el microscopio
Bitacora:-Colocar equipo de bioseguridad 15 minutos
-Enfoque grupal del microscopio 30 minutos
-Enfoque por Genaro 3 minutos
-Enfoque por ilan 3 minutos
-Enfoque por eric 6 minutos
-Enfoque por erick 5 minutos
-Observación de cebolla 3 minutos
-Obervacion de Tomate 5 minutos
-Observaciones de repollo 2 minutos
Conclusion:En esta primera práctica aprendimos a enfocar el microscopio compuesto, moviendo las pinzas para la platina al igual que los tornillos macro y micrométrico hasta obtener un perfecto enfoque.Como parte de la práctica observemos muestras de vegetales: Cebollas, tomate y repollo.
Fue muy interesante ver como esta constituido, ya que es algo que el ojo humano por si solo no puede captar.Sin duda este era el primer paso para poder realizar las siguientes prácticas.Ficha bibliografica:-Apuntes del laboratorio de Química.
MOLECULAS INORGANICAS
Se denomina compuesto inorgánico a todos aquellos compuestos que están formados por distintos elementos pero en los que su componente principal no siempre es el carbono, siendo el agua el más importante.Entre los compuestos inorgánicos más importantes de los seres vivos tenemos el agua y las sales minerales que abundan en el suelo, y el dióxido de carbono, el cual exhalamos nosotros cuando respiramos.-Moléculas inorgánicas: Agua, sales minerales y gases.-Ejemplos de compuestos inorgánicos:-Cloruro de sodio- Agua- Amoniaco- Dióxido de Carbono-El cloruro: Es necesario para la elaboracion del acido clorhídrico del tejido gástrico.-Sodio: Interviene en la regulación del balanceo hídrico favoreciendo la retención de agua.-Potasio: Actúa en el balanceo hídrico favoreciendo la eliminación de agua.-Yodo: Necesario para que la glándula tiroides elabore la secreción hormonal que regula el metabolismo.-Hierro: Imprensindible para la formación de la hemorragia de los glóbulos rojos.-Calcio y fósforo: Constituyen la parte inorgánica de los huesos-CO2: Fundamental para el proceso de la fotosíntesis.
Se denomina compuesto inorgánico a todos aquellos compuestos que están formados por distintos elementos pero en los que su componente principal no siempre es el carbono, siendo el agua el más importante.Entre los compuestos inorgánicos más importantes de los seres vivos tenemos el agua y las sales minerales que abundan en el suelo, y el dióxido de carbono, el cual exhalamos nosotros cuando respiramos.-Moléculas inorgánicas: Agua, sales minerales y gases.-Ejemplos de compuestos inorgánicos:-Cloruro de sodio- Agua- Amoniaco- Dióxido de Carbono-El cloruro: Es necesario para la elaboracion del acido clorhídrico del tejido gástrico.-Sodio: Interviene en la regulación del balanceo hídrico favoreciendo la retención de agua.-Potasio: Actúa en el balanceo hídrico favoreciendo la eliminación de agua.-Yodo: Necesario para que la glándula tiroides elabore la secreción hormonal que regula el metabolismo.-Hierro: Imprensindible para la formación de la hemorragia de los glóbulos rojos.-Calcio y fósforo: Constituyen la parte inorgánica de los huesos-CO2: Fundamental para el proceso de la fotosíntesis.
PRUEBAS SEROLOGICAS
Pruebas serológicasSe denomina pruebas serológicas a las realizadas sobre el suero, uno de los componentes de la sangre, para detectar anticuerpos.De este modo existen análisis serológicos para detectar distintos tipos de enfermedades:Estas a su vez se dividen en dos: no-treponémicas y treponémicas.Las pruebas no treponémicas son usadas para despistaje, son económicas y, también, sirven para evaluar la eficacia del tratamiento.Las pruebas treponémicas detectan anticuerpos y Se le utiliza para verificar cuando las pruebas no-treponémicas son reactivas o como pruebas confirmatorias cuando el cuadro clínico es sugestivo, pero la serología es negativa, como ocurre en la sífilis tardía.Reacciones Febriles: Las pruebas febriles (PF) son pruebas serológicas que se han empleado para diagnosticar tifoidea, paratifoidea, ricketsiosis y brucelosis; se basan en aglutinación con extractos bacterianos de los antígenos O y H de Salmonella tiphy, antígeno H de Salmonella Paratiphy, proteusox19 y antígenos contra Brucella abortus.Pruebas de VDRL: Examen de tramizaje para sifilis que los nticuerpos llamados reagias, que pueden ser producidos por el treponema Pallidum. Sin embargo el cuerpo no siempre produce reagina especificamente en respuesta a la bacteria de la sifilis, por lo que el examen no siempre es presiso.
Prueba de EmbarazoLos métodos precoces son los que permiten detectar el embarazo en sus primeros días y antes de su principal síntoma, la suspensión de la menstruación o amenorrea. A lo largo del tiempo se usaron diversos métodos que hoy sabemos estaban basados en que cuando una mujer queda embarazada aparecen en su orina hormonas antes inexistentes. Los primeros métodos usaron los efectos visibles que estas hormonas tienen sobre plantas y animales, llamados por esta razón métodos biológicos de detección de embarazos. A partir de la década de 1960 se desarrollaron métodos de detección directa basados en que las reacciones inmunológicos que producen estas hormonas pueden hacerse visibles usando antígenos específicos a ellas.
Pruebas serológicasSe denomina pruebas serológicas a las realizadas sobre el suero, uno de los componentes de la sangre, para detectar anticuerpos.De este modo existen análisis serológicos para detectar distintos tipos de enfermedades:Estas a su vez se dividen en dos: no-treponémicas y treponémicas.Las pruebas no treponémicas son usadas para despistaje, son económicas y, también, sirven para evaluar la eficacia del tratamiento.Las pruebas treponémicas detectan anticuerpos y Se le utiliza para verificar cuando las pruebas no-treponémicas son reactivas o como pruebas confirmatorias cuando el cuadro clínico es sugestivo, pero la serología es negativa, como ocurre en la sífilis tardía.Reacciones Febriles: Las pruebas febriles (PF) son pruebas serológicas que se han empleado para diagnosticar tifoidea, paratifoidea, ricketsiosis y brucelosis; se basan en aglutinación con extractos bacterianos de los antígenos O y H de Salmonella tiphy, antígeno H de Salmonella Paratiphy, proteusox19 y antígenos contra Brucella abortus.Pruebas de VDRL: Examen de tramizaje para sifilis que los nticuerpos llamados reagias, que pueden ser producidos por el treponema Pallidum. Sin embargo el cuerpo no siempre produce reagina especificamente en respuesta a la bacteria de la sifilis, por lo que el examen no siempre es presiso.
Prueba de EmbarazoLos métodos precoces son los que permiten detectar el embarazo en sus primeros días y antes de su principal síntoma, la suspensión de la menstruación o amenorrea. A lo largo del tiempo se usaron diversos métodos que hoy sabemos estaban basados en que cuando una mujer queda embarazada aparecen en su orina hormonas antes inexistentes. Los primeros métodos usaron los efectos visibles que estas hormonas tienen sobre plantas y animales, llamados por esta razón métodos biológicos de detección de embarazos. A partir de la década de 1960 se desarrollaron métodos de detección directa basados en que las reacciones inmunológicos que producen estas hormonas pueden hacerse visibles usando antígenos específicos a ellas.
Transcrito de la camara de Neubauer
Recuento de eritrocitos:
ejemploObserve que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x.
Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente..Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:Mujeres:3.9-5.6 millones/µlHombres:4.5-6.5 millones/µlTécnicas de estudio de líneas celularesUna suspensión celular se caracteriza porpresentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido.Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células enla suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células seemplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contajecelular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos(cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el"Cell Coulter"El principio del contador celular se basa en lamedida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuandouna partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa unpequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entrelos electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículasque se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificiodesplaza su propio volumen de electrolito.
El volumen desplazado es medidocomo un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional alvolumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión quecircula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de laspartículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo,independientemente de su forma, color y densidad.Sinembargo, esposible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos.
Nosbasta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y unmicroscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que secoloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unasseñales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo elmicroscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puededeterminar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contajeadaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se tratade un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cualse ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se veen la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre doslineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada Lcorresponde a 1 milimetro cuadrado.
La depresión central del cubreobjetosestá hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubrecon un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y elvolumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.Si contamos las cuatro áreas sombreada (L)observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración enla suspensión celular será :concentración en la suspensión (células / mL) =10000 (x/4)En la imagen puedes observar el aspecto de unade las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como unacuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagenha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.Existen numerosos modelos de cámaras de contajecelular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar unacámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.Para determinar la viabilidad celular seemplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán.El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las célulasque presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen enla imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables.
Asimilarcélulas blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por estemétodo se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión,determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existenotros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más precisode la tinción con ioduro depropidioseaseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se cogeentre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante através de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.2. Se deshecha la primeragota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de diluciónperfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarsela pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros).
Hay que evitar la entrada deburbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir elenrasado.3. A continuación se toma conla pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así,la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de lapipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizadola pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquidode Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).4.
Tomamos la pipeta (o eltubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de lagoma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotaspor corresponder al líquido que estaba en el capilar5. Se adapta un cubreobjetossobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno delos lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículode la misma.6. Una vez preparada lacámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos enreposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luzdébil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia alfuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadradospequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento seprocede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada yalcohol-éter sucesivamente.7.El volumen de sangre en elcual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de lacámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el númerode cuadrados contados.Con cámara de NEUBAUER:
Superficie de 1cuadrado grande (1/20 mm de lado):Si contamos "a" glóbulos rojos en"n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado seráa/n.Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/nglóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:siendo X el número de glóbulos rojos existentespor cada mm3 de sangre diluida.Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200,habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cualobtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojosexistentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).Se utilizan para calcular, mediante el uso delmicroscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) porunidad de voluimen de un líquido.La cámara está constituida poruna placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central seencuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran lascuadrículas de recuento.La fórmula de contaje es:partículas/mm3= partículas contadas.Clases de cámaras:- Neubauer improved: Es el másutilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)- Neubauer: La diferencia esel cuadro grande central.- Thoma: Se utiliza solo parael recuento de eritrocitos.- Fuchs-Rosenthal: Se utilizahabitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquidosinovial
Recuento de eritrocitos:
ejemploObserve que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x.
Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente..Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:Mujeres:3.9-5.6 millones/µlHombres:4.5-6.5 millones/µlTécnicas de estudio de líneas celularesUna suspensión celular se caracteriza porpresentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido.Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células enla suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células seemplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contajecelular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos(cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el"Cell Coulter"El principio del contador celular se basa en lamedida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuandouna partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa unpequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entrelos electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículasque se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificiodesplaza su propio volumen de electrolito.
El volumen desplazado es medidocomo un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional alvolumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión quecircula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de laspartículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo,independientemente de su forma, color y densidad.Sinembargo, esposible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos.
Nosbasta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y unmicroscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que secoloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unasseñales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo elmicroscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puededeterminar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contajeadaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se tratade un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cualse ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se veen la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre doslineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada Lcorresponde a 1 milimetro cuadrado.
La depresión central del cubreobjetosestá hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubrecon un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y elvolumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.Si contamos las cuatro áreas sombreada (L)observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración enla suspensión celular será :concentración en la suspensión (células / mL) =10000 (x/4)En la imagen puedes observar el aspecto de unade las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como unacuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagenha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.Existen numerosos modelos de cámaras de contajecelular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar unacámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.Para determinar la viabilidad celular seemplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán.El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las célulasque presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen enla imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables.
Asimilarcélulas blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por estemétodo se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión,determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existenotros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más precisode la tinción con ioduro depropidioseaseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se cogeentre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante através de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.2. Se deshecha la primeragota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de diluciónperfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarsela pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros).
Hay que evitar la entrada deburbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir elenrasado.3. A continuación se toma conla pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así,la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de lapipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizadola pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquidode Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).4.
Tomamos la pipeta (o eltubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de lagoma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotaspor corresponder al líquido que estaba en el capilar5. Se adapta un cubreobjetossobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno delos lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículode la misma.6. Una vez preparada lacámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos enreposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luzdébil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia alfuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadradospequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento seprocede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada yalcohol-éter sucesivamente.7.El volumen de sangre en elcual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de lacámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el númerode cuadrados contados.Con cámara de NEUBAUER:
Superficie de 1cuadrado grande (1/20 mm de lado):Si contamos "a" glóbulos rojos en"n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado seráa/n.Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/nglóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:siendo X el número de glóbulos rojos existentespor cada mm3 de sangre diluida.Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200,habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cualobtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojosexistentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).Se utilizan para calcular, mediante el uso delmicroscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) porunidad de voluimen de un líquido.La cámara está constituida poruna placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central seencuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran lascuadrículas de recuento.La fórmula de contaje es:partículas/mm3= partículas contadas.Clases de cámaras:- Neubauer improved: Es el másutilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)- Neubauer: La diferencia esel cuadro grande central.- Thoma: Se utiliza solo parael recuento de eritrocitos.- Fuchs-Rosenthal: Se utilizahabitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquidosinovial
BACTERIAS ACTIVAS DENTRO DE MEDIO DE CULTIVO HABILITADO
Cuando se desea cultivar bacterias, es necesario tomar en cuenta los componentes nutritivos, sales, humedad y las condiciones físicas como lo son el PH, la luz y temperatura. Una bacteria puede alterar el PH del medio de cultivo como resultado de la degradación de sustancias producidas por la propia bacteria.
Por otro lado las bacterias en su conjunto presentan una respuesta variable al oxígeno libre clasificandose en cnco grupos:
* Aerobicos...Bacterias que crecen en presencia de oxígen libre.
* Anaerobicos...Bacterias que crecen en ausencia de oxígeno libre.
* Anaerobios...Facultativas, bacterias que crecen en presencia como en ausencia de oxígeno libre.
* Aerotolerantes...Bacterias que pueden tolerar el oxígeno y crecen en su presencia aun cuando no lo utilizan.
* Micro aerofilas...Bacterias que crecen en presencia de pequeñas cantidades de O libre.
Cuando se desea cultivar bacterias, es necesario tomar en cuenta los componentes nutritivos, sales, humedad y las condiciones físicas como lo son el PH, la luz y temperatura. Una bacteria puede alterar el PH del medio de cultivo como resultado de la degradación de sustancias producidas por la propia bacteria.
Por otro lado las bacterias en su conjunto presentan una respuesta variable al oxígeno libre clasificandose en cnco grupos:
* Aerobicos...Bacterias que crecen en presencia de oxígen libre.
* Anaerobicos...Bacterias que crecen en ausencia de oxígeno libre.
* Anaerobios...Facultativas, bacterias que crecen en presencia como en ausencia de oxígeno libre.
* Aerotolerantes...Bacterias que pueden tolerar el oxígeno y crecen en su presencia aun cuando no lo utilizan.
* Micro aerofilas...Bacterias que crecen en presencia de pequeñas cantidades de O libre.
Investigación de pie de rey
El pie de rey, también denominado cartabón de corredera, calibre, pie de metro, pie a coliza o Vernier, es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, desde centímetros hasta fracciones de milímetros (1/10 de milímetro, 1/20 de milímetro, 1/50 de milímetro). En la escala de las pulgadas tiene divisiones equivalentes a 1/16 de pulgada, y, en su nonio, de 1/128 de pulgadas.
Es un instrumento sumamente delicado y debe maniobrarse con habilidad, cuidado y delicadeza, con precaución de no rayarlo ni doblarlo (en especial, la coliza de profundidad).Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas.
El pie de rey, también denominado cartabón de corredera, calibre, pie de metro, pie a coliza o Vernier, es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, desde centímetros hasta fracciones de milímetros (1/10 de milímetro, 1/20 de milímetro, 1/50 de milímetro). En la escala de las pulgadas tiene divisiones equivalentes a 1/16 de pulgada, y, en su nonio, de 1/128 de pulgadas.
Es un instrumento sumamente delicado y debe maniobrarse con habilidad, cuidado y delicadeza, con precaución de no rayarlo ni doblarlo (en especial, la coliza de profundidad).Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas.
Cuestionario 1 segunda unidad
Cuestionario:
1 Segunda unidad.
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama:
R=Pedro Núñez
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
3.- También se ha llamado pie de rey al:
R= Pie de vernier
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra Pedro Vernier.
R= 1631
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?
R=Vernier
Nombre: Pie de rey_______________________________________En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición
1 Mordazas para medidas externas
2 Mordazas para medidas internas
3 Coliza para medida de profundidades
4 Escala con divisiones en cm y mm
5 Escala con divisiones en pulgada y fracciones de pulgada
6 Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esta dividido
7 Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esta dividido
8 Botón de deslizamiento y freno
Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción. Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.
Cuestionario:
1 Segunda unidad.
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama:
R=Pedro Núñez
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
3.- También se ha llamado pie de rey al:
R= Pie de vernier
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra Pedro Vernier.
R= 1631
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?
R=Vernier
Nombre: Pie de rey_______________________________________En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición
1 Mordazas para medidas externas
2 Mordazas para medidas internas
3 Coliza para medida de profundidades
4 Escala con divisiones en cm y mm
5 Escala con divisiones en pulgada y fracciones de pulgada
6 Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esta dividido
7 Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esta dividido
8 Botón de deslizamiento y freno
Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción. Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.
Salmonella, Brucella y Proteus 0x19
Investigación de salmonella, Brucella y Proteus 0x19
Salmonella es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Su tamaño oscila entre 1 y 3 mm de longitud y entre 0.5 y 0.7 mm de diámetro.El género Salmonella es de taxonomía difícil, modificada en estos últimos años por el aporte de estudios moleculares de homología de ADN que han clarificado el panorama taxonómico de las enterobacterias.El tratamiento taxonómico actual de Salmonella ha simplificado el espectro, reagrupando todas las cepas (patógenas o no) en dos únicas especies: S. enterica y S. bongori. Ésta última (previamente subespecie V) no es patógena para el ser humano.La especie S. enterica tiene seis subespecies (a veces presentadas como subgrupos bajo numeración romana):• I enterica• II salamae• IIIa arizonae• IIIb diarizonae• IV houtenae• V S. bongori, ya incluida en una especie distinta• VI indicaCon importancia clínico epidemiológica, las más de 2000 serovariedades de Salmonella pueden agruparse en tres divisiones ecológicas (spp. son subespecies):1. Salmonella spp. adaptadas a vivir en el ser humano, entre ellas, S. typhi, S. paratyphi A, B y C;2. Salmonella spp. adaptadas a hospederos no humanos, que circunstancialmente pueden producir infección en el hombre, entre ellas, S. dublin y S. cholerae-suis;3. Salmonella spp. sin adaptación específica de hospedero, que incluye a unas 1800 serovariedades de amplia distribución en la naturaleza, las cuales causan la mayoría de las salmonelosis en el mundo.
Brucella Es un género de bacterias Gram negativas. Son cocobacilos pequeños (0,5-0,7 por 0.6-1.5 µm), no-móviles y encapsulados.Tipos de Brucella-B. melitensis. Infecta cabras y ovejas-B. abortus. Infecta vacas-B. suis. Infecta cerdos-B. ovis, infecta ovejas-B. neotomae-B. pinnipediae. Infecta mamíferos marinos.
Proteus 0x19Género de bacterias Gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una B. galactosidasa, son: oxidasa-negativas y ureasa- positivo.Es un género de bacteria ubicuos, residentes del tracto intestinal del hombre y otros animales.(Taxonomía) se clasifican en 3:P. VulgarisP. MirabilisP. Penneri
Investigación de salmonella, Brucella y Proteus 0x19
Salmonella es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Su tamaño oscila entre 1 y 3 mm de longitud y entre 0.5 y 0.7 mm de diámetro.El género Salmonella es de taxonomía difícil, modificada en estos últimos años por el aporte de estudios moleculares de homología de ADN que han clarificado el panorama taxonómico de las enterobacterias.El tratamiento taxonómico actual de Salmonella ha simplificado el espectro, reagrupando todas las cepas (patógenas o no) en dos únicas especies: S. enterica y S. bongori. Ésta última (previamente subespecie V) no es patógena para el ser humano.La especie S. enterica tiene seis subespecies (a veces presentadas como subgrupos bajo numeración romana):• I enterica• II salamae• IIIa arizonae• IIIb diarizonae• IV houtenae• V S. bongori, ya incluida en una especie distinta• VI indicaCon importancia clínico epidemiológica, las más de 2000 serovariedades de Salmonella pueden agruparse en tres divisiones ecológicas (spp. son subespecies):1. Salmonella spp. adaptadas a vivir en el ser humano, entre ellas, S. typhi, S. paratyphi A, B y C;2. Salmonella spp. adaptadas a hospederos no humanos, que circunstancialmente pueden producir infección en el hombre, entre ellas, S. dublin y S. cholerae-suis;3. Salmonella spp. sin adaptación específica de hospedero, que incluye a unas 1800 serovariedades de amplia distribución en la naturaleza, las cuales causan la mayoría de las salmonelosis en el mundo.
Brucella Es un género de bacterias Gram negativas. Son cocobacilos pequeños (0,5-0,7 por 0.6-1.5 µm), no-móviles y encapsulados.Tipos de Brucella-B. melitensis. Infecta cabras y ovejas-B. abortus. Infecta vacas-B. suis. Infecta cerdos-B. ovis, infecta ovejas-B. neotomae-B. pinnipediae. Infecta mamíferos marinos.
Proteus 0x19Género de bacterias Gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una B. galactosidasa, son: oxidasa-negativas y ureasa- positivo.Es un género de bacteria ubicuos, residentes del tracto intestinal del hombre y otros animales.(Taxonomía) se clasifican en 3:P. VulgarisP. MirabilisP. Penneri
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